亚洲视频福利,日本精品一区二区三区在线,日韩欧美在线视频一区二区,国产高清自产拍av在线,99久久99久久精品国产片果冻,国产视频手机在线,成人禁在线观看午夜亚洲

 單個細胞加力模式如下圖：由兩束細胞無損激光夾持細胞進行牽拉或擠壓，進而使單個細胞受到牽張拉伸或壓縮力刺激。

系統(tǒng)亮點特性： 

1 ）可大量表征單細胞機械力特性、操作簡便、樣品消耗量小 該系統(tǒng)的微流控芯片具有與細胞直徑良好相符性的微納米級腔道，并能實現(xiàn)對微流體的精確控制，使其尤其適合單細胞機械特性研究分析，該微流控的高通量技術(shù)便于大量表征單細胞機械力特性、操作簡便、樣品消耗量小、集成和微型化程度高等優(yōu)點，且在分析過程中單細胞懸浮高速流經(jīng)檢測區(qū)域，該連續(xù)流動態(tài)檢測的特性極大提高了系統(tǒng)的通量。 2）高速對單個細胞進行形變，并進行機械特性高速表征，單細胞高通量流變 利用兩素未聚焦光進行單細胞形變，并通過圖形化微柱基地表征細胞的力特性,高速有效分析單細胞水平的機械特性, 高達300個細胞/小時. 3）非機械接觸、無標記進行細胞捕捉和拉伸，確保細胞安全與細胞損傷***小化(Contact-free cell deformation)利用光延伸器技術(shù)測試細胞機械特性能時，在非機械接觸情況下細胞進行捕捉和拉伸，且不需要對激光進行聚焦，能實現(xiàn)細胞損傷***小化。優(yōu)于AFM（原子力顯微鏡）和光鑷 4）將光延伸器安全性與微流控高通量完美相結(jié)合，細胞機械特性測試分析安全而且高效 采用2個微流道來輸送細胞，使兩條光纖垂直分布于通道兩側(cè)并嚴格對準? ，單細胞隨流體進入檢測區(qū)域時，首先采用功率較低的光速捕獲細胞，然后增加光速的功率使細胞發(fā)生形變。通過對細胞變形能力的分析，不僅能區(qū)分病變細胞和正常細胞，而且可以用于辨別轉(zhuǎn)型特性和非轉(zhuǎn)移特性的癌細胞。 5)自動化測量單細胞力屬性和成像記錄細胞形變記錄 對應(yīng)于用戶定義的拉伸模式，細胞被自動傳送到測量區(qū)域由CellStretcher模塊控制所有組件和自動測量細胞；細胞形變由系統(tǒng)CCD相機自動記錄，并由CellEvaluator自動提取記錄顯微圖像形變數(shù)據(jù)，CellReporter可視化統(tǒng)計分析表征參數(shù)。在光學拉伸加載運行實驗中，科研學者可專注于闡述實驗結(jié)果 6)良好溫控微環(huán)境罩 

 中國代理服務(wù)商：北京思睿維科技有限公司  馬金龍  18601970048

Publications

RS ZELLTECHNIK BROCHURES

The Optical Stretcher

OPTICAL STRETCHER TECHNOLOGY

Lincoln, B., Schinkinger, S., Travis, K., Wottawah, F., Ebert, S., Sauer, F., Guck, J., 2007. Reconfigurable microfluidic integration of a dual-beam laser trap with biomedical applications. Biomed. Microdevices 9, 703–710. doi:10.1007/s10544-007-9079-xEbert, S., Travis, K., Lincoln, B., Guck, J., 2007. Fluorescence ratio thermometry in a microfluidic dual-beam laser trap. Opt. Express 15, 15493–15499. doi:10.1364/OE.15.015493Jensen-McMullin, C., Lee, H.P., Lyons, E.R.L., 2005. Demonstration of trapping, motion control, sensing and fluorescence detection of polystyrene beads in a multi-fiber optical trap. Opt. Express 13, 2634–2642. doi:10.1364/OPEX.13.002634Wottawah, F., Schinkinger, S., Lincoln, B., Ananthakrishnan, R., Romeyke, M., Guck, J., K?s, J., 2005. Optical Rheology of Biological Cells. Phys. Rev. Lett. 94, 098103. doi:10.1103/PhysRevLett.94.098103Lincoln, B., Erickson, H.M., Schinkinger, S., Wottawah, F., Mitchell, D., Ulvick, S., Bilby, C., Guck, J., 2004. Deformability-based flow cytometry.Cytometry A 59A, 203–209. doi:10.1002/cyto.a.20050

THEORETICAL MODELS

Ananthakrishnan, R., Guck, J., Wottawah, F., Schinkinger, S., Lincoln, B., Romeyke, M., Kas, J., 2005. Modelling the structural response of an eukaryotic cell in the optical stretcher. Curr. Sci. 88.B. Bareil, P., Sheng, Y., Chiou, A., 2006. Local scattering stress distribution on surface of a spherical cell in optical stretcher. Opt. Express 14, 12503–12509. doi:10.1364/OE.14.012503 Bareil, P.B., Sheng, Y., Chen, Y.-Q., Chiou, A., 2007. Calculation of spherical red blood cell deformation in a dual-beam optical stretcher. Opt. Express 15, 16029–16034. doi:10.1364/OE.15.016029 Boyde, L., Ekpenyong, A., Whyte, G., Guck, J., 2012. Comparison of stresses on homogeneous spheroids in the optical stretcher computed with geometrical optics and generalized Lorenz–Mie theory. Appl. Opt. 51, 7934–7944. doi:10.1364/AO.51.007934Ekpenyong, A.E., Posey, C.L., Chaput, J.L., Burkart, A.K., Marquardt, M.M., Smith, T.J., Nichols, M.G., 2009. Determination of cell elasticity through hybrid ray optics and continuum mechanics modeling of cell deformation in the optical stretcher. Appl. Opt. 48, 6344–6354. doi:10.1364/AO.48.006344Teo, S.-K., Goryachev, A.B., Parker, K.H., Chiam, K.-H., 2010. Cellular deformation and intracellular stress propagation during optical stretching.Phys. Rev. E 81, 051924. doi:10.1103/PhysRevE.81.051924

CANCER RESEARCH AND DIAGNOSTICS

Kastl, L., Budde, B., Isbach, M., Rommel, C., Kemper, B., Schnekenburger, J., 2015. Optomechanical properties of cancer cells revealed by light-induced deformation and quantitative phase microscopy. pp. 952908–952908–6. doi:10.1117/12.2184764Martin, M., Müller, K., Cadenas, C., Hermes, M., Zink, M., Hengstler, J.G., K?s, J.A., 2012. ERBB2 overexpression triggers transient high mechanoactivity of breast tumor cells. Cytoskeleton 69, 267–277. doi:10.1002/cm.21023Fritsch, A., H?ckel, M., Kiessling, T., Nnetu, K.D., Wetzel, F., Zink, M., K?s, J.A., 2010. Are biomechanical changes necessary for tumour progression? Nat. Phys. 6, 730–732. doi:10.1038/nphys1800Brunner, C., Niendorf, A., K?s, J.A., 2009. Passive and active single-cell biomechanics: a new perspective in cancer diagnosis. Soft Matter 5, 2171–2178. doi:10.1039/B807545JRemmerbach, T.W., Wottawah, F., Dietrich, J., Lincoln, B., Wittekind, C., Guck, J., 2009. Oral Cancer Diagnosis by Mechanical Phenotyping. Cancer Res. 69, 1728–1732. doi:10.1158/0008-5472.CAN-08-4073Martin, M., Mueller, K., Wottawah, F., Schinkinger, S., Lincoln, B., Romeyke, M., K?s, J.A., 2006. Feeling with light for cancer. p. 60800P–60800P–10. doi:10.1117/12.637899Guck, J., Schinkinger, S., Lincoln, B., Wottawah, F., Ebert, S., Romeyke, M., Lenz, D., Erickson, H.M., Ananthakrishnan, R., Mitchell, D., K?s, J., Ulvick, S., Bilby, C., 2005. Optical Deformability as an Inherent Cell Marker for Testing Malignant Transformation and Metastatic Competence. Biophys. J. 88, 3689–3698. doi:10.1529/biophysj.104.045476 

STEM CELL RESEARCH

Ekpenyong, A.E., Whyte, G., Chalut, K., Pagliara, S., Lautenschlaeger, F., Fiddler, C., Paschke, S., Keyser, U.F., Chilvers, E.R., Guck, J., 2012.Viscoelastic Properties of Differentiating Blood Cells Are Fate- and Function-Dependent. Plos One 7, e45237. doi:10.1371/journal.pone.0045237Galle, J., Bader, A., Hepp, P., Grill, W., Fuchs, B., Kas, J.A., Krinner, A., MarquaB, B., Muller, K., Schiller, J., Schulz, R.M., von Buttlar, M., von der Burg, E., Zscharnack, M., Loffler, M., 2010. Mesenchymal Stem Cells in Cartilage Repair: State of the Art and Methods to monitor Cell Growth, Differentiation and Cartilage Regeneration. Curr. Med. Chem. 17, 2274–2291. doi:10.2174/092986710791331095Maloney, J.M., Nikova, D., Lautenschlager, F., Clarke, E., Langer, R., Guck, J., Van Vliet, K.J., 2010. Mesenchymal Stem Cell Mechanics from the Attached to the Suspended State. Biophys. J. 99, 2479–2487. doi:10.1016/j.bpj.2010.08.052Lautenschl?ger, F., Paschke, S., Schinkinger, S., Bruel, A., Beil, M., Guck, J., 2009. The regulatory role of cell mechanics for migration of differentiating myeloid cells. Proc. Natl. Acad. Sci. 106, 15696–15701 doi:10.1073/pnas.0811261106

IMMUNE SYSTEM

Man, S.M., Ekpenyong, A., Tourlomousis, P., Achouri, S., Cammarota, E., Hughes, K., Rizzo, A., Ng, G., Wright, J.A., Cicuta, P., Guck, J.R., Bryant, C.E., 2014. Actin polymerization as a key innate immune effector mechanism to control Salmonella infection. Proc. Natl. Acad. Sci. 201419925 doi:10.1073/pnas.1419925111

BASIC RESEARCH

Schmidt, B.U.S., Kie?ling, T.R., Warmt, E., Fritsch, A.W., Stange, R., K?s, J.A., 2015. Complex thermorheology of living cells. New J. Phys. 17, 073010. doi:10.1088/1367-2630/17/7/073010Chan, C.J., Ekpenyong, A.E., Golfier, S., Li, W., Chalut, K.J., Otto, O., Elgeti, J., Guck, J., Lautenschl?ger, F., 2015. Myosin II Activity Softens Cells in Suspension. Biophys. J. 108, 1856–1869. doi:10.1016/j.bpj.2015.03.009Gladilin, E., Gonzalez, P., Eils, R., 2014. Dissecting the contribution of actin and vimentin intermediate filaments to mechanical phenotype of suspended cells using high-throughput deformability measurements and computational modeling. J. Biomech. 47, 2598–2605. doi:10.1016/j.jbiomech.2014.05.020Maloney, J.M., Vliet, K.J.V., 2014. Chemoenvironmental modulators of fluidity in the suspended biological cell. Soft Matter. doi:10.1039/C4SM00743CWarmt, E., Kie?ling, T.R., Stange, R., Fritsch, A.W., Zink, M., K?s, J.A., 2014. Thermal instability of cell nuclei. New J. Phys. 16, 073009. doi:10.1088/1367-2630/16/7/073009Gyger, M., Stange, R., Kiessling, T.R., Fritsch, A., Kostelnik, K.B., Beck-Sickinger, A.G., Zink, M., Kaes, J.A., 2014. Active contractions in single suspended epithelial cells. Eur. Biophys. J. Biophys. Lett. 43, 11–23. doi:10.1007/s00249-013-0935-8Seltmann, K., Fritsch, A.W., K?s, J.A., Magin, T.M., 2013. Keratins significantly contribute to cell stiffness and impact invasive behavior. Proc. Natl. Acad. Sci. 201310493. doi:10.1073/pnas.1310493110Maloney, J.M., Lehnhardt, E., Long, A.F., Van Vliet, K.J., 2013. Mechanical fluidity of fully suspended biological cells. Biophys. J. 105, 1767–1777. doi:10.1016/j.bpj.2013.08.040Kie?ling, T.R., Stange, R., K?s, J.A., Fritsch, A.W., 2013. Thermorheology of living cells—impact of temperature variations on cell mechanics. New J. Phys. 15, 045026. doi:10.1088/1367-2630/15/4/045026Kie?ling, T.R., Herrera, M., Nnetu, K.D., Balzer, E.M., Girvan, M., Fritsch, A.W., Martin, S.S., K?s, J.A., Losert, W., 2013. Analysis of multiple physical parameters for mechanical phenotyping of living cells. Eur. Biophys. J. 42, 383–394. doi:10.1007/s00249-013-0888-yPaschke, S., Weidner, A.F., Paust, T., Marti, O., Beil, M., Ben-Chetrit, E., 2013. Technical advance: Inhibition of neutrophil chemotaxis by colchicine is modulated through viscoelastic properties of subcellular compartments. J. Leukoc. Biol. 94, 1091–1096. doi:10.1189/jlb.1012510Chalut, K.J., H?pfler, M., Lautenschl?ger, F., Boyde, L., Chan, C.J., Ekpenyong, A., Martinez-Arias, A., Guck, J., 2012. Chromatin decondensation and nuclear softening accompany Nanog downregulation in embryonic stem cells. Biophys. J. 103, 2060–2070. doi:10.1016/j.bpj.2012.10.015Matthews, H.K., Delabre, U., Rohn, J.L., Guck, J., Kunda, P., Baum, B., 2012. Changes in Ect2 localization couple actomyosin-dependent cell shape changes to mitotic progression. Dev. Cell 23, 371–383. doi:10.1016/j.devcel.2012.06.003Mauritz, J.M.A., Esposito, A., Tiffert, T., Skepper, J.N., Warley, A., Yoon, Y.-Z., Cicuta, P., Lew, V.L., Guck, J.R., Kaminski, C.F., 2010. Biophotonic techniques for the study of malaria-infected red blood cells. Med. Biol. Eng. Comput. 48, 1055–1063. doi:10.1007/s11517-010-0668-0Rusciano, G., 2010. Experimental analysis of Hb oxy–deoxy transition in single optically stretched red blood cells. Phys. Med. 26, 233–239. doi:10.1016/j.ejmp.2010.02.001

AGING PROCESSES

Schulze, C., Wetzel, F., Kueper, T., Malsen, A., Muhr, G., Jaspers, S., Blatt, T., Wittern, K.-P., Wenck, H., K?s, J.A., 2010. Stiffening of Human Skin Fibroblasts with Age. Biophys. J. 99, 2434–2442. doi:10.1016/j.bpj.2010.08.026

VESICLES

Delabre, U., Feld, K., Crespo, E., Whyte, G., Sykes, C., Seifert, U., Guck, J., 2015. Deformation of phospholipid vesicles in an optical stretcher. Soft Matter. doi:10.1039/C5SM00562KSolmaz, M.E., Sankhagowit, S., Biswas, R., Mejia, C.A., Povinelli, M.L., Malmstadt, N., 2013. Optical stretching as a tool to investigate the mechanical properties of lipid bilayers. Rsc Adv. 3, 16632–16638. doi:10.1039/c3ra42510j Solmaz, M.E., Biswas, R., Sankhagowit, S., Thompson, J.R., Mejia, C.A., Malmstadt, N., Povinelli, M.L., 2012. Optical stretching of giant unilamellar vesicles with an integrated dual-beam optical trap. Biomed. Opt. Express 3, 2419–2427. doi:10.1364/BOE.3.002419

TECHNICAL ADVANCES

Grosser, S., Fritsch, A.W., Kie?ling, T.R., Stange, R., K?s, J.A., 2015. The lensing effect of trapped particles in a dual-beam optical trap. Opt. Express 23, 5221–5235. doi:10.1364/OE.23.005221Bellini, N., Bragheri, F., Cristiani, I., Guck, J., Osellame, R., Whyte, G., 2012. Validation and perspectives of a femtosecond laser fabricated monolithic optical stretcher. Biomed. Opt. Express 3, 2658–2668. doi:10.1364/BOE.3.002658 Bellini, N., Vishnubhatla, K.C., Bragheri, F., Ferrara, L., Minzioni, P., Ramponi, R., Cristiani, I., Osellame, R., 2010. Femtosecond laser fabricated monolithic chip for optical trapping and stretching of single cells. Opt. Express 18, 4679–4688. doi:10.1364/OE.18.004679中國代理服務(wù)商：北京思睿維科技有限公司  馬金龍  18601970048

德國原裝UV150能量計 UV-INT150能量儀 德國UV150紫外線能量計

（ UV-Integrator150能量計 產(chǎn)地：德國原裝UV150能量計）

德國UV150紫外線能量計是用于測量曝光裝置的UV能量的一種儀器，UV150測量儀的主感器在測量儀的背面，測量范圍為250~410納米，測量時可直接顯示于UV能量計正面的顯示屏上讀出（單位：毫焦耳/平方厘米），該UV能量計的電源為3.6伏特的鋰電池，該電池由于使用了特別的能源節(jié)省線路，該電池可持續(xù)大約10000小時。

德國UV150能量計 技術(shù)數(shù)據(jù)：

尺寸：直徑90mm 高12mm　　　　　

重量：約150g 適用設(shè)備：UV紫外線干燥機、曝光機　　　

 測量范圍：0-5000mW/cm2　　　　

 能量顯示：LCD 0-999999mj/cm2

電源： 鋰電池3.6V UV

測量范圍： 250-410nm（光譜圖波長）

耗電量： 約10000小時（Lithiwn鋰電池）

 工作溫度（℃）： 0～70℃ 本UV能量計在輸送帶上耐溫110℃不超過10秒

德國原裝UV-INT150紫外線能量計！德國原廠UV150能量計！

UV-150能量計使用/操作

a． 打開ON開關(guān)，則LCD（顯示屏）是顯示為零。

b． 將UV能量計放置于曝光UV燈源附近,以其背面對準燈源（UV能量計的能量感受器在背面）.

c． 直到UV能量計的顯示屏上有測量顯示，例如800毫焦耳/平方厘米。（800mj/cm2）

 d． 將顯示屏的值記錄或作為品質(zhì)控制與實驗參數(shù)，關(guān)掉UV能量計開關(guān)（OFF）。